貨號 | 產(chǎn)品名稱 | 英文名稱 | CAS號 | 產(chǎn)品特征 |
Js14031-100g | 葡聚糖凝膠G-25 | Sephadex G-25 | 9041-35-4 | 分離:肽及球形蛋白質(zhì)：1000～5000；葡聚糖（線性分子）：100～5000 |
Js14031-25g | 葡聚糖凝膠G-25 | Sephadex G-25 | 9041-35-4 | 分離:肽及球形蛋白質(zhì)：1000～5000；葡聚糖（線性分子）：100～5000 |
Js14031-500g | 葡聚糖凝膠G-25 | Sephadex G-25 | 9041-35-4 | 分離:肽及球形蛋白質(zhì)：1000～5000；葡聚糖（線性分子）：100～5000 |
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英文名： Sephadex G-25
別名： 交聯(lián)葡聚糖凝膠G-25
CAS號： 9041-35-4
此說明僅限參考
葡聚糖凝膠 G 系列使用說明
1化學(xué)和物理性質(zhì)
葡聚糖凝膠是一種珠狀的凝膠，含有大量的羥基，很容易在水中和電解質(zhì)溶液中溶脹。親水基質(zhì)使其非特異性吸附最小化，并在生物分子分離期間得到較高的回收率。G 型的葡聚糖凝膠有各種不同的交聯(lián)度，因此它們的溶脹度和分級分離范圍也有所不同。葡聚糖凝膠的溶脹度基本上不因鹽和洗滌劑的存在而受影響。
葡聚糖凝膠有不同的粒度。超細(xì)級的葡聚糖凝膠是用于需要*分辨率的柱色譜和薄層色譜。粗級和中級的凝膠用于制備性色譜過程，可在較低的壓力下獲得較高的流速。另外， 粗級也可用于批量工藝。
2產(chǎn)品說明
產(chǎn) 品 名 稱 分離范圍（球蛋白） 應(yīng) 用
葡聚糖凝膠 G-10 <700 緩沖液交換、脫鹽，分離小分子，去除小分子
葡聚糖凝膠 G-15 <1500 緩沖液交換、脫鹽，分離小分子，去除小分子
葡聚糖凝膠 G-25 1000-5000 工業(yè)上脫鹽及交換緩沖液
葡聚糖凝膠 G-50 1000-30000 多肽分離、脫鹽、清洗生物提取液、分子量測定
葡聚糖凝膠 G-75 2000-70000 蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定
葡聚糖凝膠 G-100 2000-120000 蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定
葡聚糖凝膠 G-150 5000-300000 蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定
葡聚糖凝膠 G-200 5000-600000 蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數(shù)測定
3使用方法
葡聚糖凝膠 G 系列產(chǎn)品以干粉形式存在，使用前必須溶脹，在膨脹期間應(yīng)避免過度攪拌，因?yàn)樗赡芷茐奶盍希灰褂么帕嚢杵鳌?/span>
3.1填料的準(zhǔn)備
（1）將填料在過量去離子水或緩沖液中，室溫條件下膨脹 3 小時(shí)，或用熱水膨脹 1 小時(shí)。洗脫緩沖液不應(yīng)含有高粘度的試劑。溶脹過程中，如果上層有碎膠，請去除。
（2）將溶脹好的填料，所有的緩沖液等材料平衡至實(shí)驗(yàn)操作溫度。
3.2裝柱
（1）檢查層析柱所有部件，特別是過濾網(wǎng)，密封圈，螺旋塞是否緊密，玻璃管是否干凈和完整。
（2）將柱內(nèi)及柱子底端用水或緩沖液潤濕并保持一小段液位（液面略高于濾膜），務(wù) 必使底端無氣泡。
（3）用玻璃棒引導(dǎo)勻漿沿著柱內(nèi)壁一次性倒入柱內(nèi)，注意勿使產(chǎn)生氣泡。打開柱子出液口，使凝膠在柱內(nèi)自由沉降，連結(jié)好柱子頂端柱頭。
（4）打開蠕動泵，讓緩沖液用使用時(shí)流速的 1.33 倍的流速流過，使柱床穩(wěn)定（注意壓力不要超過填料最大耐壓）。
3.3平衡
上樣前平衡層析柱至少 5-10 個(gè)柱體積直到記錄儀基線變得平穩(wěn)為止（流出液的 PH 值和等電點(diǎn)等于上柱的Buffer 的PH 值和等電點(diǎn)）。
3.4上樣
樣品一定要離心或過濾后（0.45um）上樣。
凝膠過濾的上樣量一般為不大于 5%的柱床體積，我們建議初次上樣控制在1-2%的柱床體積，視分離情況可以調(diào)整；脫鹽時(shí)上樣量可以達(dá)到 20%的柱床體積，柱高的選擇也與分離要求相關(guān)，柱高過高的凝膠層會引起較大的反壓，應(yīng)當(dāng)盡可能避免。難分離物質(zhì)要有一定柱高和流速控制，脫鹽時(shí)高徑比為 5：1 即可。
3.5洗脫方法
可以用無鹽水，也可以采用上柱時(shí)的緩沖液洗脫；在上柱 Buffer 中加入 NaCl 等梯度洗脫或鹽梯度洗脫也可以*分離純化。
3.8 在位清洗（CIP）
凝膠使用十次后作一次 CIP，目的是去除柱床內(nèi)沉淀的及頑固殘留的蛋白。方法是以40cm/h 用 0.1 M 氫氧化鈉洗四個(gè)柱體積，再以至少三個(gè)柱體積平衡緩沖液再生。
注意事項(xiàng)：
1.上樣之前，樣品必須經(jīng)過膜過濾及去除色素，否則雜質(zhì)及色素會被吸附到填料上，影響填料的正常使用。
2.在使用過程中，避免使用高濃度的強(qiáng)酸強(qiáng)堿，酸和堿的濃度應(yīng)低于 0.15 摩爾。堿會使流速變慢。
3.不同的樣品，吸附和洗脫方法不相同，可以根據(jù)相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行。
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